Genomas de seis virus que infectan arqueas de Asgard desde lo más profundo

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Oct 07, 2023

Genomas de seis virus que infectan arqueas de Asgard desde lo más profundo

microbiología de la naturaleza volumen 7,

Nature Microbiology volumen 7, páginas 953–961 (2022)Citar este artículo

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Las arqueas de Asgard son microorganismos procarióticos distribuidos globalmente relacionados con los eucariotas; sin embargo, no se han descrito virus que infecten a estos organismos. Aquí, utilizando secuencias de metagenoma recuperadas de sedimentos hidrotermales de aguas profundas, caracterizamos seis genomas virales de ADN de doble cadena (dsDNA) relativamente grandes (hasta 117 kb) que infectaron dos filos de arqueas de Asgard, Lokiarchaeota y Helarchaeota. Estos virus codifican proteínas estructurales similares a Caudovirales, así como proteínas distintas de las descritas en virus arqueales conocidos. Sus genomas contienen alrededor del 1% al 5% de los genes asociados con los virus de ADN grande nucleocitoplasmático eucariótico (NCLDV) y parecen ser capaces de replicación, reparación, modificaciones epigenéticas y regulación transcripcional semiautónomas del genoma. Además, los virus Helarchaeota pueden secuestrar sistemas de ubiquitina del huésped similares a los virus eucariotas. El análisis genómico de estos virus Asgard revela que contienen características de virus tanto procarióticos como eucarióticos, y proporciona información sobre sus posibles mecanismos de infección e interacción con el huésped.

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Las secuencias genómicas asociadas con el estudio se han depositado en NCBI bajo BioProject PRJNA692327.

Todos los scripts personalizados, alineaciones y archivos de árbol filogenético están disponibles en https://github.com/bakermicrolab/asgardviruses.

Spang, A. et al. Arqueas complejas que cierran la brecha entre procariotas y eucariotas. Naturaleza 521, 173–179 (2015).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Zaremba-Niedzwiedzka, K. et al. Las arqueas de Asgard iluminan el origen de la complejidad celular eucariota. Naturaleza 541, 353–358 (2017).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Eme, L., Spang, A., Lombard, J., Stairs, CW y Ettema, TJG Archaea y el origen de los eucariotas. Nat. Rev. Microbiol. 15, 711–723 (2017).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Baker, BJ y col. Diversidad, ecología y evolución de Archaea. Nat. Microbiol. 5, 887–900 (2020).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Imachi, H. et al. Aislamiento de un archaeon en la interfaz procariota-eucariota. Naturaleza 577, 519–525 (2020).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Spang, A. et al. Propuesta del modelo de flujo inverso para el origen de la célula eucariota basado en análisis comparativos del metabolismo de las arqueas de Asgard. Nat. Microbiol. 4, 1138–1148 (2019).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Bell, PJL Evidencia que respalda un origen viral del núcleo eucariota. Resolución de virus 289, 198168 (2020).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Forterre, P. & Gaïa, M. Los virus gigantes y el origen de los eucariotas modernos. actual Opinión Microbiol. 31, 44–49 (2016).

Artículo PubMed Google Académico

Chaikeeratisak, V. et al. Montaje de una estructura similar a un núcleo durante la replicación viral en bacterias. Ciencia 355, 194–197 (2017).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Malone, LM et al. Un fago gigante que forma una estructura similar a un núcleo evade la selección de ADN CRISPR-Cas pero es vulnerable a la inmunidad basada en ARN tipo III. Nat. Microbiol. 5, 48–55 (2020).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Iyer, LM, Aravind, L. & Koonin, EV Origen común de cuatro familias diversas de grandes virus de ADN eucariótico. J.Virol. 75, 11720–11734 (2001).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Krupovic, M., Dolja, VV & Koonin, EV El LUCA y su viroma complejo. Nat. Rev. Microbiol. 18, 661–670 (2020).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Makarova, KS y col. Clasificación evolutiva de los sistemas CRISPR-Cas: un estallido de clase 2 y variantes derivadas. Nat. Rev. Microbiol. 18, 67–83 (2020).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Dombrowski, N., Teske, AP & Baker, BJ Versatilidad metabólica microbiana expansiva y biodiversidad en sedimentos hidrotermales dinámicos de la cuenca de Guaymas. Nat. común 9, 4999 (2018).

Artículo PubMed PubMed Central CAS Google Scholar

Castelle, CJ et al. El contenido de la familia de proteínas descubre las relaciones de linaje y los mecanismos de mantenimiento de la vía bacteriana en DPANN Archaea. Frente. Microbiol. 12, 660052 (2021).

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Langwig, MV et al. La comparación del nivel de proteína a gran escala de Deltaproteobacteria revela grupos metabólicos cohesivos. ISME J. https://doi.org/10.1038/s41396-021-01057-y (2021).

Kieft, K., Zhou, Z. & Anantharaman, K. VIBRANT: recuperación automatizada, anotación y curación de virus microbianos, y evaluación de la función de la comunidad viral a partir de secuencias genómicas. Microbioma 8, 90 (2020).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Prangishvili, D. et al. La enigmática virosfera archaeal. Nat. Rev. Microbiol. 15, 724–739 (2017).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Nayfach, S. et al. CheckV evalúa la calidad y la integridad de los genomas virales ensamblados en el metagenoma. Nat. Biotecnología. 39, 578–585 (2021).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Kazlauskas, D., Krupovic, M. y Venclovas, Č. La lógica de la replicación del ADN en virus de ADN de doble cadena: conocimientos del análisis global de los genomas virales. Ácidos Nucleicos Res. 44, 4551–4564 (2016).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Pons, JC et al. Clase VPF: Asignación taxonómica y predicción de huéspedes de virus no cultivados en base a familias de proteínas virales. Bioinformática https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btab026 (2021).

Krupovic, M., Cvirkaite-Krupovic, V., Iranzo, J., Prangishvili, D. & Koonin, EV Virus de arqueas: genómica estructural, funcional, ambiental y evolutiva. Resolución de virus 244, 181–193 (2018).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Yutin, N., Wolf, YI, Raoult, D. & Koonin, EV Virus de ADN nucleocitoplasmático grande eucariota: grupos de genes ortólogos y reconstrucción de la evolución del genoma viral. Virol. J. 6, 223 (2009).

Artículo PubMed PubMed Central CAS Google Scholar

Koonin, EV & Dolja, VV El mundo de los virus como una red evolutiva de virus y elementos egoístas sin cápside. Microbiol. mol. Biol. Rev. 78, 278–303 (2014).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Iranzo, J., Koonin, EV, Prangishvili, D., Krupovic, M. y Sandri-Goldin, RM Análisis de red bipartito de la virosfera arqueal: conexiones evolutivas entre virus y elementos móviles sin cápside. J.Virol. 90, 11043–11055 (2016).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Kala, S. et al. Las proteínas HNH son un componente generalizado de las máquinas de envasado de ADN de fagos. proc. Academia Nacional. ciencia EE. UU. 111, 6022–6027 (2014).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Guilliam, TA, Keen, BA, Brissett, NC & Doherty, AJ Las primasas-polimerasas son una superfamilia funcionalmente diversa de enzimas de replicación y reparación. Ácidos Nucleicos Res. 43, 6651–6664 (2015).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Gupta, A., Lad, SB, Ghodke, PP, Pradeepkumar, PI & Kondabagil, K. Mimivirus codifica una primasa multifuncional con actividades de síntesis de ADN/ARN polimerasa, transferasa terminal y translesión. Ácidos Nucleicos Res. 47, 6932–6945 (2019).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

MacNeill, SA Proteínas de unión a PCNA en las arqueas: nueva funcionalidad más allá del núcleo conservado. actual Gineta. 62, 527–532 (2016).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Mazzon, C. et al. Desoxirribonucleotidasas citosólicas y mitocondriales: actividad con análogos de sustrato, inhibidores e implicaciones para la terapia. Bioquímica Farmacol. 66, 471–479 (2003).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Colson, P., La Scola, B., Levasseur, A., Caetano-Anollés, G. & Raoult, D. Mimivirus: liderando el camino en el descubrimiento de virus gigantes de amebas. Nat. Rev. Microbiol. 15, 243–254 (2017).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Doherty, AJ, Serpell, LC y Ponting, CP El motivo de unión al ADN hélice-horquilla-hélice: una base estructural para el reconocimiento de ADN no específico de secuencia. Ácidos Nucleicos Res. 24, 2488–2497 (1996).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Iyer, LM, Balaji, S., Koonin, EV y Aravind, L. Genómica evolutiva de virus de ADN grandes nucleocitoplasmáticos. Resolución de virus 117, 156–184 (2006).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Sim, S., Hughes, K., Chen, X. & Wolin, SL La proteína bacteriana Ro60 y sus reguladores de ARN Y no codificantes. año Rev. Microbiol. 74, 387–407 (2020).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Ho, CK, Wang, LK, Lima, CD y Shuman, S. Estructura y mecanismo de la ARN ligasa. Estructura 12, 327–339 (2004).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Tang, Q., Wu, P., Chen, H. y Li, G. Funciones pleiotrópicas del sistema ubiquitina-proteasoma durante la propagación viral. Ciencias de la vida 207, 350–354 (2018).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Murphy, J., Mahony, J., Ainsworth, S., Nauta, A. & van Sinderen, D. Metiltransferasas de ADN huérfano de bacteriófagos: información sobre su origen bacteriano, función y ocurrencia. aplicación Reinar. Microbiol. 79, 7547–7555 (2013).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Jeudy, S. et al. La exploración de la propagación de transpovirons dentro de Mimiviridae revela un ejemplo único de comensalismo en el mundo viral. ISME J. 14, 727–739 (2020).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Agarkova, IV, Dunigan, DD & Van Etten, JL Endonucleasas de restricción asociadas a virión de clorovirus. J.Virol. 80, 8114–8123 (2006).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Markine-Goriaynoff, N. et al. Glicosiltransferasas codificadas por virus. J. Gen. Virol. 85, 2741–2754 (2004).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Piacente, F., Gaglianone, M., Laugieri, ME & Tonetti, MG La glicosilación autónoma de grandes virus de ADN. En t. J. Mol. ciencia 16, 29315–29328 (2015).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Hagelueken, G. et al. Un dominio de bobina enrollada actúa como una regla molecular para regular la longitud de la cadena del antígeno O en el lipopolisacárido. Nat. Estructura. mol. Biol. 22, 50–56 (2014).

Artículo PubMed PubMed Central CAS Google Scholar

Tamarit, D. et al. Un cromosoma cerrado de Odinarchaeum expone los virus de las arqueas de Asgard. Nat. Microbiol. https://doi.org/10.1038/s41564-022-01122-y (2022).

Artículo PubMed Google Académico

Medvedeva, S. et al. Tres familias de virus de arqueas Asgard identificadas en genomas ensamblados en metagenoma. Nat. Microbiol. https://doi.org/10.1038/s41564-022-01144-6 (2022).

Artículo PubMed Google Académico

Joshi, NA & Fass, JN Sickle: una herramienta de recorte basada en la calidad, adaptable y de ventana deslizante para archivos FastQ (versión 1.33) [Software] (2011). https://github.com/najoshi/hoz

Peng, Y., Leung, HCM, Yiu, SM & Chin, FYL IDBA-UD: un ensamblador de novo para datos de secuenciación metagenómica y de una sola célula con una profundidad muy desigual. Bioinformática 28, 1420–1428 (2012).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Parks, DH, Imelfort, M., Skennerton, CT, Hugenholtz, P. & Tyson, GW CheckM: evaluación de la calidad de los genomas microbianos recuperados de aislamientos, células individuales y metagenomas. Genoma Res. 25, 1043–1055 (2015).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Alneberg, J. et al. Agrupación de contigs metagenómicos por cobertura y composición. Nat. Métodos 11, 1144–1146 (2014).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Kang, DD et al. MetaBAT 2: un algoritmo de binning adaptativo para la reconstrucción robusta y eficiente del genoma a partir de ensamblajes de metagenoma. PeerJ 7, e7359 (2019).

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Sieber, CMK et al. Recuperación de genomas a partir de metagenomas a través de una estrategia de desreplicación, agregación y puntuación. Nat. Microbiol. 3, 836–843 (2018).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Chen, I.-MA et al. IMG/M v.5.0: un sistema integrado de gestión de datos y análisis comparativo para genomas microbianos y microbiomas. Ácidos Nucleicos Res. 47, D666–D677 (2019).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Jones, P. et al. InterProScan 5: clasificación de funciones de proteínas a escala genómica. Bioinformática 30, 1236–1240 (2014).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Biswas, A., Staals, RHJ, Morales, SE, Fineran, PC & Brown, CM CRISPRDetect: un algoritmo flexible para definir matrices CRISPR. BMC Genomics 17, 356 (2016).

Artículo PubMed PubMed Central CAS Google Scholar

Fu, L., Niu, B., Zhu, Z., Wu, S. & Li, W. CD-HIT: acelerado para agrupar los datos de secuenciación de próxima generación. Bioinformática 28, 3150–3152 (2012).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Bland, C. et al. Herramienta de reconocimiento CRISPR (CRT): una herramienta para la detección automática de repeticiones palindrómicas agrupadas regularmente interespaciadas. BMC Bioinformática 8, 209 (2007).

Artículo PubMed PubMed Central CAS Google Scholar

Li, H. & Durbin, R. Alineación de lectura corta rápida y precisa con la transformada de Burrows-Wheeler. Bioinformática 25, 1754–1760 (2009).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Danecek, P. et al. Doce años de SAMtools y BCFtools. Gigaciencia 10, giab008 (2021).

Artículo PubMed PubMed Central CAS Google Scholar

Padilha, VA, Alkhnbashi, OS, Shah, SA, de Carvalho, ACPLF y Backofen, R. CRISPRcasIdentifier: aprendizaje automático para la identificación y clasificación precisas de los sistemas CRISPR-Cas. Gigaciencia 9, giaa062 (2020).

Artículo PubMed PubMed Central CAS Google Scholar

Makarova, KS y col. Una clasificación evolutiva actualizada de los sistemas CRISPR-Cas. Nat. Rev. Microbiol. 13, 722–736 (2015).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Koonin, EV, Makarova, KS & Zhang, F. Diversidad, clasificación y evolución de los sistemas CRISPR-Cas. actual Opinión Microbiol. 37, 67–78 (2017).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Nethery, MA et al. CRISPRclassify: clasificación basada en repeticiones de loci CRISPR. CRISPR J. 4, 558–574 (2021).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Hyatt, D. et al. Pródigo: reconocimiento de genes procarióticos e identificación del sitio de inicio de la traducción. BMC Bioinformática 11, 119 (2010).

Artículo PubMed PubMed Central CAS Google Scholar

Aramaki, T. et al. KofamKOALA: Asignación de ortólogos de KEGG basada en el perfil HMM y el umbral de puntuación adaptable. Bioinformática 36, ​​2251–2252 (2019).

Artículo PubMed Central CAS Google Académico

El-Gebali, S. et al. La base de datos de familias de proteínas de Pfam en 2019. Nucleic Acids Res. 47, D427–D432 (2019).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Grazziotin, AL, Koonin, EV & Kristensen, DM Grupos ortólogos de virus procarióticos (pVOG): un recurso para la genómica comparativa y la anotación de familias de proteínas. Ácidos Nucleicos Res. 45, D491–D498 (2017).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Eddy, SR Búsquedas aceleradas de perfiles HMM. Cómputo PLoS. Biol. 7, e1002195 (2011).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Guo, J. et al. VirSorter2: un enfoque multiclasificador guiado por expertos para detectar diversos virus de ADN y ARN. Microbioma 9, 37 (2021).

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Camacho, C. et al. BLAST+: arquitectura y aplicaciones. BMC Bioinformática 10, 421 (2009).

Artículo PubMed PubMed Central CAS Google Scholar

Buchfink, B., Xie, C. & Huson, DH Alineación de proteínas rápida y sensible usando DIAMOND. Nat. Métodos 12, 59–60 (2014).

Artículo PubMed CAS Google Académico

Schulz, F. et al. Diversidad de virus gigantes e interacciones del huésped a través de la metagenómica global. Naturaleza 578, 432–436 (2020).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Cantú, VA et al. PhANNs, una herramienta y un servidor web rápidos y precisos para clasificar proteínas estructurales de fagos. Cómputo PloS. Biol. 16, e1007845 (2020).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Zimmermann, L. et al. Un kit de herramientas de bioinformática MPI completamente reimplementado con un nuevo servidor HHpred en su núcleo. J. Mol. Biol. 430, 2237–2243 (2018).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Grant, JR & Stothard, P. El servidor CGView: una herramienta de genómica comparativa para genomas circulares. Ácidos Nucleicos Res. 36, W181–W184 (2008).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Bin Jang, H. et al. La asignación taxonómica de genomas de virus procarióticos no cultivados está habilitada por redes de intercambio de genes. Nat. Biotecnología. 37, 632–639 (2019).

Artículo CAS Google Académico

Nepusz, T., Yu, H. & Paccanaro, A. Detección de complejos de proteínas superpuestas en redes de interacción proteína-proteína. Nat. Métodos 9, 471–472 (2012).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Enright, AJ, Van Dongen, S. & Ouzounis, CA Un algoritmo eficiente para la detección a gran escala de familias de proteínas. Ácidos Nucleicos Res. 30, 1575–1584 (2002).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Sayers, EW et al. Base de datos de recursos del Centro Nacional de Información Biotecnológica. Ácidos Nucleicos Res. 37, D5-D15 (2009).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Al-Shayeb, B. et al. Clados de fagos enormes de todos los ecosistemas de la Tierra. Naturaleza 578, 425–431 (2020).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Shannon, P. et al. Cytoscape: un entorno de software para modelos integrados de redes de interacción biomolecular. Genoma Res. 13, 2498–2504 (2003).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

RStudio: Entorno de desarrollo integrado para R (Equipo de RStudio, 2019).

R: un lenguaje y entorno para la computación estadística (R Core Team, 2020).

Rudis, B. & Gandy, D. waffle: crear visualizaciones de gráficos waffle en R (2016).

Yutin, N., Wolf, YI & Koonin, EV Origen de los virus gigantes a partir de virus de ADN más pequeños, no a partir de un cuarto dominio de la vida celular. Virología 466-467, 38–52 (2014).

Artículo CAS PubMed Google Académico

Páez-Espino, D. et al. IMG/VR: una base de datos de virus y retrovirus de ADN cultivados y no cultivados. Ácidos Nucleicos Res. 45, D457–D465 (2017).

CAS PubMed Google Académico

Wu, F. et al. Elementos móviles únicos y flujo de genes escalable en el límite procariota-eucariota revelado por genomas circularizados de arqueas de Asgard. Nat. Microbiol. 7, 200–212 (2022).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Andersson, AF & Banfield, JF Dinámica de poblaciones de virus y resistencia adquirida a virus en comunidades microbianas naturales. Ciencia 320, 1047–1050 (2008).

Artículo CAS PubMed Google Académico

De Anda, V. et al. Comprender los mecanismos detrás de la respuesta a la perturbación ambiental en las esteras microbianas: un enfoque basado en redes metagenómicas. Frente. Microbiol. 9, 2606 (2018).

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Zhang, R. et al. SpacePHARER: identificación sensible de fagos de espaciadores CRISPR en huéspedes procarióticos. Bioinformática 37, 3364–3366 (2021).

Artículo CAS PubMed Central Google Académico

Guglielmini, J., Woo, AC, Krupovic, M., Forterre, P. y Gaia, M. La diversificación de virus dsDNA eucariotas gigantes y grandes es anterior al origen de los eucariotas modernos. proc. Academia Nacional. ciencia EE. UU. 116, 19585–19592 (2019).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Katoh, K. & Standley, DM Software de alineación de secuencias múltiples MAFFT versión 7: mejoras en el rendimiento y la usabilidad. mol. Biol. Evol. 30, 772–780 (2013).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Minh, BQ et al. IQ-TREE 2: nuevos modelos y métodos eficientes para la inferencia filogenética en la era genómica. mol. Biol. Evol. 37, 1530-1534 (2020).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Kalyaanamoorthy, S., Minh, BQ, Wong, TKF, von Haeseler, A. y Jermiin, LS ModelFinder: selección rápida de modelos para estimaciones filogenéticas precisas. Nat. Métodos 14, 587–589 (2017).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Edgar, RC MUSCLE: alineación de secuencias múltiples con alta precisión y alto rendimiento. Ácidos Nucleicos Res. 32, 1792–1797 (2004).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Letunic, I. & Bork, P. Interactive Tree Of Life (iTOL) v5: una herramienta en línea para la visualización y anotación de árboles filogenéticos. Ácidos Nucleicos Res. 49, W293–W296 (2021).

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

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Este trabajo fue apoyado por becas del Proyecto Moore-Simons sobre el Origen de la Célula Eucariota (beca de la Fundación Simons 73592LPI; https://doi.org/10.46714/735925LPI; BJB) y el Premio de Carrera Temprana de la Fundación Simons (687165, BJB ). Agradecemos a D. Tamarit y T. Ettema por las discusiones sobre esta investigación; AP Teske (Departamento de Ciencias Marinas, Universidad de Carolina del Norte en Chapel Hill, Chapel Hill, NC, EE. UU.) por proporcionar los sedimentos de la cuenca de Guaymas.

Margarita V. Langwig

Dirección actual: Departamento de Bacteriología y Departamento de Biología Integrativa, Universidad de Wisconsin-Madison, Madison, WI, EE. UU.

Departamento de Ciencias Marinas, Universidad de Texas en Austin, Port Aransas, TX, EE. UU.

Ian M. Rambo, Marguerite V. Langwig, Peter Lion, Valerie De Anda y Brett J. Baker

Departamento de Biología Integrativa, Universidad de Texas en Austin, Austin, TX, EE. UU.

Brett J. Panadero

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VDA y BJB conceptualizaron el proyecto. IMR, VDA y MVL seleccionaron los datos. BJB adquirió financiación. IMR, VDA y PL realizaron las investigaciones. IMR, VDA y BJB desarrollaron la metodología. BJB y VDA administraron y supervisaron el proyecto. BJB adquirió recursos. IMR, VDA y PL crearon las visualizaciones. IMR, VDA, MVL y BJB escribieron el borrador original. IMR, VDA, MVL, PL y BJB revisaron y editaron el manuscrito.

Correspondencia a Brett J. Baker.

Los autores declaran no tener conflictos de intereses.

Nature Microbiology agradece a Susanne Erdmann, Hiroyuki Ogata y los otros revisores anónimos por su contribución a la revisión por pares de este trabajo. Los informes de los revisores están disponibles.

Nota del editor Springer Nature se mantiene neutral con respecto a los reclamos jurisdiccionales en mapas publicados y afiliaciones institucionales.

a, Arquitectura genómica del virus Helarchaeota completo Nidhogg Meg22_1012. De afuera hacia el centro: genes descritos en el texto principal, genes con homólogos no descritos en el texto principal, proteínas hipotéticas, contenido de GC, regla del tamaño del genoma. Las flechas que apuntan a la izquierda indican el sentido (-), mientras que las que apuntan a la derecha indican el sentido (+). b, Estructuras de los genomas lineales de Fenrir, Sköll y Ratatoskr. La longitud de la secuencia se designa por la medida en el eje x. Los genes con productos hipotéticos no tienen etiquetas y están coloreados en gris. Las ubicaciones de coincidencia del espaciador CRISPR se resaltan con barras verticales, coloreadas para representar 0 o 1 discrepancias en la alineación.

valor medio (virus Asgard = 89 108 / virus Archaea = 35 450); Valor mínimo (virus Asgard = 39 909 / Virus Archaea = 5 278); valor máximo (virus Asgard = 117 419 / virus Archaea = 103 257); Valor atípico del virus Archaea = 143.855. Los datos y el código de esta figura están disponibles en https://github.com/bakermicrolab/asgardviruses.

El eje y indica la profundidad de lectura promedio para un contig dentro de su muestra respectiva, y cada host Asgard se muestra en el eje x. Cada punto en el eje x contiene dos diagramas de caja y bigotes que indican las profundidades de lectura promedio para los contigs virales vinculados (izquierda) y los contigs del huésped (derecha). Los puntos de datos representan valores medios. La asignación taxonómica se designa por el color de los puntos y/o casilla. La profundidad de lectura promedio se calculó para cada contig utilizando lecturas de la misma muestra utilizada en el ensamblaje. Helarchaeota Meg19_1012_Bin_504 (virus: n = 3, min=25,52, max=173,4, mid=32,50; MAG: n = 170, min=9,12, mean=56,58, max=81,45, SD = 5,8, 1er cuartil=54,9, 3er cuartil =58.9), Lokiarchaeota Meg22_1012_Bin_233 (virus: n = 1, 77.5; MAG: n = 94, min=6.16, mean=37.3, max=202.9, SD = 24.8, 1er cuartil=31.5, 3er cuartil=34.3), Lokiarchaeota Meg22_1214_B en_191 (virus: n = 1, 17,05; MAG: n = 246, min = 8,1, media = 44,8, max = 1253, SD = 95,6, 1er cuartil = 29,7, 3er cuartil = 39,7), Lokiarchaeota Meg22_1416_Bin_151 (virus: n = 1 , 16,32; MAG: n = 217, min = 5,9, media = 17, max = 48, SD = 3,7, 1er cuartil = 15,7, 3er cuartil = 18,5).

Los virus se agrupan en el eje x según su anfitrión, con los NCLDV incluidos en su propia categoría. El eje y indica el porcentaje de genes presentes con éxitos en NCVOG (ver Métodos). Cada punto en el gráfico representa un genoma viral. Virus bacterianos n = 33442, media = 2, DE = ± 1,2; Archaeal virus n = 84, media = 2,4' SD = ± 1,4; Virus Asgard n = 6, media = 2,2, DE = ± 1,4; Virus eucariótico n = 362, media = 36, DE = ± 39; NCLDV n = 149, media = 78, SD = 21.

Los virus se agrupan en el eje Y en función de su anfitrión, con porcentajes en el eje X que indican la proporción de aciertos de NCVOG asignados a una función particular. Los NCVOG que se encuentran en los virus Asgard están relacionados con la replicación, recombinación y reparación del ADN o proteínas de estructura viral. El primer grupo de NCVOG se encuentra comúnmente en virus que infectan bacterias y también se puede observar en virus que infectan a otros grupos de arqueas y eucariotas. El segundo grupo de NCVOG no se encuentra tan comúnmente en otros virus, lo que puede sugerir una estructura similar de los virus Asgard y NCLDV.

Un árbol filogenético de 241 secuencias de desoxinucleótido/monofosfato quinasa lateral de virus y bacterias. Los círculos en las ramas indican soportes BOOSTER ≥70. Las secuencias del virus Lokiarchaeota Fenrir Meg22_1012 y Meg22_1214 están resaltadas en dorado. La filogenia se infirió utilizando el modelo LG con frecuencias base fijas y 1000 arranques rápidos.

Un árbol filogenético de 368 secuencias de proteínas de la enzima activadora de ubiquitina (E1) de arqueas, bacterias, eucariotas y virus (los taxones están etiquetados con colores de fondo). Se identificaron tres secuencias de proteínas similares a E1 en los virus Nidhogg, y están marcadas con círculos negros y texto en negrita. Las líneas arqueadas muestran las conexiones entre las secuencias del virus Nidhogg y su huésped Helarchaeota. Esta filogenia se infirió utilizando el modelo LG + R8 con 1000 bootstraps ultrarrápidos y optimización por intercambio de vecinos más cercanos (-bb 1000 -bnni). Los círculos en las ramas de los árboles indican soportes de arranque ultrarrápidos ≥95. El árbol está compuesto por secuencias de proteínas que pertenecen a la familia de subunidades catalíticas E1 de la enzima activadora de NEDD8 (n = 11, IPR030468), enzima E1 activadora de ubiquitina (n = 218, IPR035985), secuencias virales obtenidas de NCBI (n = 14), y secuencias derivadas de Lokiarchaeota y Helarchaeota (n = 125).

Datos extendidos Figs. 1–7, texto complementario y descripción de los datos complementarios 1–13.

Resultados de CRISPRDetect, incluidos espaciadores y longitudes y secuencias repetidas, y detección de CRISPR; Asgard CRISPR espaciador BLASTN-salida corta contra virus de la Cuenca de Guaymas; profundidad de lectura promedio de contigs que contienen CRISPR de Asgard MAG; Impactos de SpacePHARER de los espaciadores Asgard CRISPR a los UViG de la cuenca de Guaymas; y resultados CRISPRClassify para repeticiones Asgard CRISPR.

Descripción general del genoma viral, taxonomía Asgard MAG GTDBTk y estadísticas MAG.

Información mínima sobre los metadatos del genoma de un virus no cultivado (MiUViG) para los genomas virales descritos en este estudio.

Anotaciones virales con VIBRANT, DIAMOND e InterProScan; clasificación de PhANN; y resultados de HHPred para las principales proteínas de la cápside predichas con PhANN.

Datos_suplementarios_5_Fenrir_Meg22_1012_226.pdf. Visualización de la cobertura del virus Lokiarchaeota Fenrir Meg22_1012_scaffold_226 basada en el mapeo de lectura contra la muestra Meg22_1012 realizada con BWA-MEM v0.7.17 y Samtools v1.11. Visualizado con Geneious versión 2022.0 de Biomatters. Datos_suplementarios_6_Fenrir_Meg22_1214.pdf. Visualización de la cobertura del virus Lokiarchaeota Fenrir Meg22_1214_scaffold_313 basada en el mapeo de lectura contra la muestra Meg22_1214 realizada con BWA-MEM v0.7.17 y Samtools v1.11. Visualizado con Geneious versión 2022.0 de Biomatters. Datos_suplementarios_7_Skoll_Meg22_1214_2849.pdf. Visualización de la cobertura del virus Lokiarchaeota Sköll Meg22_1214_scaffold_2849 basada en el mapeo de lectura contra la muestra Meg22_1214 realizada con BWA-MEM v0.7.17 y Samtools v1.11. Visualizado con Geneious versión 2022.0 de Biomatters. Datos_suplementarios_8_Ratatoskr_Meg22_1012_548.pdf. Visualización de la cobertura del virus Helarchaeota Ratatoskr Meg22_1012_scaffold_548 basada en el mapeo de lectura contra la muestra Meg22_1012 realizada con BWA-MEM v0.7.17 y Samtools v1.11. Visualizado con Geneious versión 2022.0 de Biomatters. Datos_suplementarios_9_Nidhogg_Meg22_1012_91.pdf. Visualización de la cobertura del virus Helarchaeota Nidhogg Meg22_1012_scaffold_91 basada en el mapeo de lectura contra la muestra Meg22_1012 realizada con BWA-MEM v0.7.17 y Samtools v1.11. Visualizado con Geneious versión 2022.0 de Biomatters. Datos_suplementarios_10_Nidhogg_Meg22_1214_152.pdf. Visualización de la cobertura del virus Helarchaeota Nidhogg Meg22_1214_scaffold_152 basada en el mapeo de lectura contra la muestra Meg22_1214 realizada con BWA-MEM v0.7.17 y Samtools v1.11. Visualizado con Geneious versión 2022.0 de Biomatters.

Secuencias utilizadas en la filogenia de la ADN polimerasa B.

Proporciones de pertenencia a la clasificación de la familia de proteínas virales (VPF) para los virus Asgard.

Las anotaciones de InterProScan de los MAG de Asgard se detallaron por primera vez en este estudio y las anotaciones de IMG/M de todos los MAG utilizados en este estudio.

Reimpresiones y permisos

Rambo, IM, Langwig, MV, Leão, P. et al. Genomas de seis virus que infectan arqueas de Asgard de sedimentos de aguas profundas. Nat Microbiol 7, 953–961 (2022). https://doi.org/10.1038/s41564-022-01150-8

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Recibido: 08 Octubre 2021

Aceptado: 16 mayo 2022

Publicado: 27 junio 2022

Fecha de emisión: julio de 2022

DOI: https://doi.org/10.1038/s41564-022-01150-8

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